Проведение биологического контроля

Для контроля работы стерилизаторов используют не вегетативные формы тест-культур, а их споры. Споры помещают на носители. Это могут быть флаконы с ватно-марлевыми пробками или чашечки из алюминиевой фольги. Подготовленные носители распределяют в контрольных точках (их число зависит от емкости камеры стерилизатора, но не менее пяти). Далее осуществляют стерилизацию паровым методом при температуре 120±2 ⁰ С, время стерилизационной выдержки 45 минут или воздушным методом при температуре 180±10 ⁰ С в течение 60 минут. По окончании стерилизации биотесты вынимают и в бактериологической лаборатории асептически проводят посев на питательные среды. Для культивирования используют питательный бульон (бульон Хоттингера, мясопептонный бульон, бульон из перевара кровяных сгустков или полусинтетическую среду с индикатором феноловым красным) с 0,5% глюкозой, который разлит по 5 мл в стерильные пробирки с ватно-марлевыми пробками.

Если проводили контроль работы парового стерилизатора (использовали Bacillus stearothermophilus ВКМ В-718), то биотесты инкубируют при температуре 55±1 ⁰ С в течение 7 суток.

Если осуществляли контроль за работой воздушного стерилизатора (использовали штамм Bacillus licheniformis G), то инкубацию в течение 7 суток проводят при температуре 37±1 ⁰ С.

Учет результатов бактериологического контроля проводят путем ежедневного визуального контроля всех биотестов с питательной средой (схема № 9). При использовании бульона Хоттингера, мясопептонного бульона, бульона из перевара кровяных сгустков, сухой питательной среды для контроля стерильности (ТГС) рост тест-культур определяют по помутнению питательной среды.

При использовании полусинтетической среды с индикатором феноловым красным рост тест-культур определяют по изменению

СХЕМА № 9